Pinopodium

Pinopodia in de baarmoeder van een mens. A, C: baarmoederslijmvliesweefsel uit de controle, B, D: baarmoederslijmvliesweefsel bij herhaaldelijk zwangerschapsverlies
(A) “Kale” endometriumcellen met weinig cilia en microvilli. (B) Verschrompelende pinopodia met gerimpeld oppervlak. (C) “Kale” baarmoederslijmvliescellen met weinig cilia (pijlen). (D) Normale baarmoederslijmvlies secretoire epitheelcellen. (E) Normale baarmoederslijmvlies secretoire epitheelcellen. (F) Epitheelcellen met korte microvilli op het apicale oppervlak
Structuur van een pinopodium bij de mens

Een pinopodium, pinopode of uterodoom is een met vocht gevuld uitsteeksel op het apicale celmembraan van baarmoederepitheelcellen.[1][2][3] Ze verschijnen tussen de 20e en 22e dag van de menstruatiecyclus, ongeveer het tijdstip van innesteling (5e tot 7e dag na de bevruchting).[3] Pinopodia blijven slechts maximaal twee dagen bestaan en worden gezien als de ultrastructurele merkers van ontvankelijkheid (decidua).[4][5][1] De eerste beschrijving van pinopodesachtige structuren in het menselijk barmoederslijmvlies werd in 1972 door Johannisson en Nilsson beschreven in een elektronenmicroscopieonderzoek.[6]

Hun ontwikkeling wordt bevorderd door progesteron en geremd door oestrogenen. Tijdens het innestelingsvenster wordt de celadhesie van cel tot cel geremd door MUC1, een glycoproteïne aan het celoppervlak, behorend tot de glycocalyx. De pinopodia zijn groter dan de microvilli en steken door de glycocalyx heen, waardoor direct contact met de aanhangende trofoblast mogelijk is. De belangrijkste eigenschap van pinopodia is het verwijderen van glycoproteïnen van de celoppervlakken van de baarmoederepitheelcellen. Er is ook aangetoond dat MUC16 van de celoppervlakken verdwijnt met de ontwikkeling van de pinopodia. Sommige onderzoeken hebben gemeld dat pinopodia trilharen insluiten, wat de beweging van het embryo verhindert en tijdens innesteling nauw contact en hechting van het embryo mogelijk maakt.[3]

Pinopodia brengen baarmoedermelk en de macromoleculen ervan in de cellen via het proces van endocytose. Dit verkleint het volume van de baarmoeder, waardoor de wanden waarin de blastocyste drijft dichter bij de blastocyste komen. De periode van actieve pinopodia zou dus het innestelingsvenster kunnen verkleinen.[7] Pinopodia blijven baarmoedermelk absorberen en verwijderen het grootste deel ervan tijdens de vroege stadia van de innesteling.[8]

Structuur en morfologie

Pinopodia worden gevormd door de zwelling van deze epitheelcellen en het samensmelten van een aantal microvilli voor het verkrijgen van een maximale grootte.[4] Pinopodia zijn gewoonlijk 5–10 μm groot. Hun structuur is afhankelijk van het stadium van de menstruatiecyclus van het organisme, aangezien pinopodia worden gereguleerd door de geslachtshormonen oestrogeen en progesteron. Studies bij ratten hebben aangetoond dat progesteron de ontwikkeling van pinopodia stimuleert, terwijl oestrogeen verantwoordelijk is voor hun teruggang.[9][10]

Over het algemeen vindt de eerste ontwikkelingsfase plaats tijdens de vroege luteale fase, rond dag 17-18 van de menstruatiecyclus. Gedurende deze tijd treden uitstulpingen van het celmembraan op. In de tweede midden-luteale ontwikkelingsfase, rond dag 20-22, zijn de pinopodia het meest prominent aanwezig. Tijdens deze fase ziet hun structuur er bolvormig en glad uit, zonder microvilli.[11] Tegen het einde van de secretoire fase, rond dag 23-35, vindt de teruggang plaats. In deze fase verschrompelt de structuur en ziet er rimpelig uit.[12] Niet alle pinopodia op het oppervlak van het baarmoederslijmvlies ontwikkelen zich op hetzelfde moment, wat de verdeling langs het membraan beïnvloedt.[2]

F-actine wordt in pinopodia gevonden. Het cytoskelet bestaat voornamelijk uit actine-microfilamenten.[2] De structuur varieert tussen de soorten. Bij knaagdieren bevatten pinopodia veel vacuolen. Pinopodia bij de mens bevatten geen grote vacuolen, maar hebben wel secretoire blaasjes, een ruw endoplasmatisch reticulum en een golgicomplex. Mitochondriën en glycogeen zijn aangetroffen bij pinopodia van zowel knaagdieren als mensen.[2] De ultrastructuur van pinopodia bij ratten verschilt aanzienlijk van die bij mensen. Bij knaagdieren komen grote vacuolen voor. Terwijl de menselijke pinopoden afkomstig zijn van het gehele oppervlak van de epitheelcel, zijn de pinopodia bij ratten door middel van een verbindingsvoet met de epitheelcel verbonden en bevatten ze een of twee grote vacuolen en ontbreken celorganellen.[5]

Andere organen en celtypen

Veel andere verschillende organen en celtypen hebben ook pinopodium-achtige (uitpuilende, microvilli-vrije) cellen. Pinopodium-achtige structuren zijn onder andere te zien op het apicale oppervlak van de luchtpijp van de muis, het cumulus-oöcytencomplex van de hond, het diepe klierlumen van het menselijke baarmoederslijmvlies, de eileider van vrouwelijke schildpadden en hagedis.[5]

Baarmoederslijmvlies ontvankelijkheid

Eerdere literatuur had de betrokkenheid van de pinopodia bij de ontvankelijkheid en innesteling in het baarmoederslijmvlies in twijfel getrokken.[5] In recentere literatuur zijn echter correlaties gevonden tussen de aanwezigheid van pinopodia en de ontvankelijkheid van het baarmoederslijmvlies (decidua). Vrouwen die in-vitrofertilisatie ondergaan en veel pinopodia hebben maken een grotere kans op embryo-innesteling en zwangerschap in vergelijking met vrouwen met een weinig pinodia,[13] Het innestelingsvenster staat bekend als de tijdsperiode waarin het baarmoederslijmvlies ontvankelijk is voor aanhechting van de blastocyst.[14] Doordat de pinopodium ontwikkeling overlapt met het innestelingsvenster, vindt er blastocyste hechting plaats met adhesiemoleculen die nodig zijn voor de innesteling.[15] Uit huidige proeven en onderzoeken is gebleken dat pinopodia een betrouwbare merker voor de ontvankelijkheid van het baarmoederslijmvlies zijn.[16]

Bronnen, noten en/of referenties
  1. a b (en) Quinn, Kelsey E., Matson, Brooke C., Wetendorf, Margeaux, Caron, Kathleen M. (2020). Pinopodes: Recent advancements, current perspectives, and future directions. Molecular and Cellular Endocrinology 501: 110644. PMID 31738970. PMC 6962535. DOI: 10.1016/j.mce.2019.110644.
  2. a b c d (en) Rarani, Fahimeh Zamani, Borhani, Fatemeh, Rashidi, Bahman (2018). Endometrial pinopode biomarkers: Molecules and microRNAs. Journal of Cellular Physiology 233 (12): 9145–9158. ISSN: 0021-9541. PMID 29968908. DOI: 10.1002/jcp.26852.
  3. a b c Quinn KE, Matson BC, Wetendorf M, Caron KM (February 2020). Pinopodes: Recent advancements, current perspectives, and future directions. Molecular and Cellular Endocrinology 501: 110644. PMID 31738970. PMC 6962535. DOI: 10.1016/j.mce.2019.110644.
  4. a b Zhao Y, He D, Zeng H, Luo J, Yang S, Chen J, Abdullah RK, Liu N (September 2021). Expression and significance of miR-30d-5p and SOCS1 in patients with recurrent implantation failure during implantation window. Reprod Biol Endocrinol 19 (1): 138. PMID 34496883. PMC 8425163. DOI: 10.1186/s12958-021-00820-2.
  5. a b c d Quinn, CE and Casper, RF. Pinopodes: a questionable role in endometrial receptivity. Human Reproduction Update 2009 15(2):229-236 http://humupd.oxfordjournals.org/cgi/content/abstract/15/2/229
  6. https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0015028216391889?via%3Dihub Johannisson, Elisabeth, and Lennart Nilsson. "Scanning electron microscopic study of the human endometrium." Fertility and Sterility 23.9 (1972): 613-625.
  7. Boron W, Boulpaep E (2004). Medical Physiology: A Cellular And Molecular Approaoch. Elsevier, Oxford. ISBN 1-4160-2328-3.
  8. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3409914/ Sharma A, Kumar P. Understanding implantation window, a crucial phenomenon. J Hum Reprod Sci. 2012 Jan;5(1):2-6. doi: 10.4103/0974-1208.97777. Retraction in: J Hum Reprod Sci. 2015 Jul-Sep;8(3):187. doi: 10.4103/0974-1208.165155. PMID 22870007; PMCID: PMC3409914.
  9. (en) Singh, M.M, Trivedi, R.N, Chauhan, S.C, Srivastava, V.M.L, Makker, A (1996). Uterine estradiol and progesterone receptor concentration, activities of certain antioxidant enzymes and dehydrogenases and histoarchitecture in relation to time of secretion of nidatory estrogen and high endometrial sensitivity in rat. The Journal of Steroid Biochemistry and Molecular Biology 59 (2): 215–224. PMID 9010337. DOI: 10.1016/S0960-0760(96)00102-1.
  10. (en) Sarantis, Loukia, Roche, Daniele, Psychoyos, Alexandra (1988). Displacement of receptivity for nidation in the rat by progesterone antagonist RU 486: a scanning electron microscopy study. Human Reproduction 3 (2): 251–255. ISSN: 1460-2350. PMID 3356782. DOI: 10.1093/oxfordjournals.humrep.a136688.
  11. (en) Quinn, C.E., Casper, R.F. (5 november 2008). Pinopodes: a questionable role in endometrial receptivity. Human Reproduction Update 15 (2): 229–236. ISSN: 1355-4786. PMID 18997181. DOI: 10.1093/humupd/dmn052.
  12. Nikas, George (2000). Endometrial Receptivity: Changes in Cell-Surface Morphology. Seminars in Reproductive Medicine 18 (3): 229–236. PMID 11299962. DOI: 10.1055/s-2000-12561.
  13. (en) Qiong, Zhang, Jie, Hao, Yonggang, Wang, Bin, Xu, Jing, Zhao (2017). Clinical validation of pinopode as a marker of endometrial receptivity: a randomized controlled trial. Fertility and Sterility 108 (3): 513–517.e2. PMID 28807395. DOI: 10.1016/j.fertnstert.2017.07.006.
  14. (en) Harper, Michael J.K. (1992). 10 The implantation window. Baillière's Clinical Obstetrics and Gynaecology 6 (2): 351–371. PMID 1424330. DOI: 10.1016/S0950-3552(05)80092-6.
  15. (en) Da Broi, Michele G., Rocha, Carlos V., Carvalho, Filomena M., Martins, Wellington P., Ferriani, Rui A. (2017). Ultrastructural Evaluation of Eutopic Endometrium of Infertile Women With and Without Endometriosis During the Window of Implantation: A Pilot Study. Reproductive Sciences 24 (10): 1469–1475. ISSN: 1933-7191. PMID 28173742. DOI: 10.1177/1933719117691142.
  16. (en) Jin, X Y, Zhao, L J, Luo, D H, Liu, L, Dai, Y D (1 december 2017). Pinopode score around the time of implantation is predictive of successful implantation following frozen embryo transfer in hormone replacement cycles. Human Reproduction 32 (12): 2394–2403. ISSN: 0268-1161. PMID 29040606. DOI: 10.1093/humrep/dex312.
Mediabestanden
Zie de categorie Pinopodes van Wikimedia Commons voor mediabestanden over dit onderwerp.
· · Sjabloon bewerken
Menselijke embryogenese in de eerste drie weken na de bevruchting
Week 1:Baarmoederslijmvlies · Decidualisatie · Decidua · Oöcytactivering · Folliculogenese · Ovariële follikel · Thecacel · Granulosacel · Corpus luteum · Eicel · Zona pellucida · Corona radiata · Spatium perivitellinum · Vitellogenese · Membrana vitellina · Dooiergang · Bevruchting · Zygote · Embryo · Klieving · Morula · Blastula · Blastocyste · Blastoporus · Trofoblast · Cytotrofoblast · Syncytiotrofoblast · Blastomeer · Cavitatie · Blastocoel · Embryoblast · Innesteling · Baarmoedermelk
Week 2:Kiemschijf · Hypoblast · Epiblast · Monoblast · Diploblast · Tripoblast
Week 3:Lamina praechordalis · Archenteron · Primitieve streep · Fovea primitiva · Primitieve knoop · Primitieve groef · Gastrula · Gastrulatie · Embryonale inductie · Allantois · Mesendoderm · Invaginatie · Hechtsteel · Extra-embryonaal mesoderm · Chorionvilli · Dooierzak · Neurulatie · Neurale plaat · Neurale plooi · Neurale groeve · Neurale lijst · Neurale buis · Neuralebuisdefect · Urachus · Voorlopernier · Oerkiemcel
Ectoderm:Oppervlakte-ectoderm · Neuro-ectoderm · Neurulatie · Neurale lijst· Zakje van Rathke
Mesoderm:Mesenchymatische stamcel · Axiaal mesoderm · Paraxiaal mesoderm · Metanefrogeen blasteem · (Somiet · Somitomeer) · Tussenliggend mesoderm · Mesoderma laminae lateralis · Coeloom · Coeloom · Mesenchyma splanchnopleurale · Mesenchyma somatopleurale · Chorion · Chorionvilli · Amnion (Vruchtvlies) · Vruchtwater · Vruchtzak (Vruchtblaas) · Allantois · Mesenchym
Endoderm:Visceraal endoderm
Overige termen:20 wekenecho · Achterhoorn · Agenesie · Alvleesklierknop · Ampulla tubae uterinae · Amniotomie · Arteriae umbilicales · Bekkeninstabiliteit · Bloedeilandje · Chorioamnionitis · Chorda dorsalis · Cloaca · Diverticulum cysticum · Doppler foetus monitor · Ductus arteriosus · Ductus venosus · Echografie · Erytropoëse · Foetale bloedsomloop · Foetale pool · Foetus · Foetushouding · Foramen ovale · Fysiologische veranderingen tijdens de zwangerschap· Gang van Wolff · Gang van Müller · Gehoorblaasje · Gelei van Wharton · Geslachtsstrengen · Gonadale richel · Groeiecho · Gubernaculum · Harde buik · Helm · Hersenblaasje · Intra-uteriene vruchtdood · In-vitrofertilisatie · Kiembaan · Kieuwspleet · Kieuwboog · Kieuwzakje · Kop-romplengte · Kunstmatige inseminatie bij de mens · Laag van Nitabuch · Laag van Rohr · Labioscrotale plooi · Lanugo · Meconium · Membraan van Heuser · Membraan van Reichert · Membrana buccopharyngea · Menselijke vruchtbaarheid · Metanefrogeen blasteem · Miskraam · Mittelschmerz · Moederkoek · Nageboorte · Navelstreng · Navelstrengbloed · Oernier · Oogbeker · Oorplacode · Pinopodium · Placenta · Placentaloslating · Placentofagie · Polyhydramnion · Pretecho · Septum urorectale · Sinus urogenitalis · Spildraai · Spiraalarterie · Stomodeum · Stroma (eierstok) · Stuitligging · Superfecundatie · Superfoetatie · Termijnecho · Tuberculum genitale · Urachus · Urineleiderknop · Urogenitale plooi · Vasa praevia · Vena umbilicalis · Vesicula optica · Vitaliteitsecho · Voorhoorn · Vroeggeboorte · Vruchtwaterpunctie · Zwangerschap · Zwangerschapscategorie · Zwangerschapsecho · Zwangerschapsmisselijkheid · Zwangerschapsvergiftiging · Zweedse Classificatie